Instrukcje western blot
żelu SDS- poliakrylamidowym ( SDS-PAGE ), z separacji białek
nitrocelulozowe membrany Obrazów wody destylowanej
transferu bufor ( 30 g Tris , 144 g glicyny i 200 ml metanolu w 1 l wody )
Bibuła filtracyjna , Whatman 3 mm
gąbka Laboratorium
Western Blot komorze przejściowej Obrazów zasilacz laboratoryjny
Laboratorium Laboratorium chłodnicy Obrazów mieszadła
roztwór soli fizjologicznej buforowanej Tris (TBS) ( 24,2 g zasady Tris , 80 g NaCl w 1 l wody )
Blokowanie rozwiązanie ( 5 procent beztłuszczowe mleko w proszku w TBS )
roztwór przeciwciała pierwotne
Oznaczone roztwór koniugatu przeciwciało
roztwór substratu fosfatazy alkalicznej z nitro niebieski tetrazoliowa plama
bufor fosforanowy ( PBS ) Foto pole Gel- imager
Pokaż więcej instrukcji
Przelew proteiny nitroceluloza Membrane
1
Przygotowanie membrany nitrocelulozowe. Membrana powinna być moczone w wodzie przez dwie minuty, a następnie umieszczane w buforze do przenoszenia i pozostawia do nasiąknięcia przez pięć minut.
2
Zestawić sandwich przenoszącego składającego się z papieru gąbka /filtr /PAGE z SDS /papier membrana nitroceluloza /filtr /gąbka . Sandwiczowa jest tak ustawione,membrana leży bliżej anody iżel bliżej katody w komorze przenoszenia.
3
Dodaje się bufor przenoszenia w komorze taksandwiczowa jest zanurzona. Umieść komorę wewnątrz laboratoryjnej lodówce . Transfer białek z żelu na membranę należy przeprowadzić w 4 stopniach Celsjusza.
4
Konfiguracja zasilacz do przesyłania białek z żelu na membranę . Kierunek przekazywania jest w kierunku wskazanym przez anodę tego przewodu . Większe Białka poruszają się szybko w reakcji na elektryczny prąd i pierwszy ruch . Zasilacz kontroluje szybkość transferu. Ustaw moc 30 V i 40 mA dla transferu przez noc.
5
Zdemontować zasilacz po zakończeniu transferu. Nie kontaktuje się z bufora transferu lub usunięcia kanapkę podczas gdy zasilacz jest przyłączony .
6
Wyjąć membranę z kanapki i inkubować przez dwie godziny w roztworze blokującym . Białka w roztworze blokującym zaabsorbuje się do membrany , gdy nie są obecne białka . Będzie on zapobiegać wiązaniu przeciwciała do błony , gdzieżądane białko nie występuje .
Wiązanieprzeciwciała
7
Inkubować błony nitrocelulozowy z roztworu podstawowego stosującprzeciwciała mieszadło . Membrana powinna być całkowicie zanurzona w roztworze przez co najmniej jedną godzinę. Dopuszczalne jest inkubować przez noc .
8
dokładnie umyć membranę celu usunięcia niezwiązanego przeciwciała. Cztery odrębne przemycia 10 minut w TBS są zwykle wystarczające do usunięcia nadmiaru przeciwciała.
9
Inkubować błony w roztworze znakowanego koniugatu przeciwciało stosując mieszadło . Membrana musi być inkubowane przez co najmniej jedną godzinę . Znakowanego koniugatu przeciwciało związane jest z fosfatazą alkaliczną. Topołączenie enzym -przeciwciało , które rozpoznaje i wiąże się z pierwszym przeciwciałem.
Wykrywanie białka
10
Przepłukać błony przez 10 minut w PBS czterokrotnie . Spowoduje to usunięcie pozostałej części oznaczonej koniugatu przeciwciał.
11
Inkubować w membranę roztworu substratu fosfatazy alkalicznej , aż pojawi się wzory band . Barwnika w roztworze substratu będzie wiązać się do przeciwciała - antygenu białka w membranie i stanowią zespół o barwie ciemnej . Proces ten może być bezpośredni lub wymagać do 30 minut przed zachowane są zespoły .
12
całkowicie błonę owinąć w celofan i umieścić go bezpośrednio na żelu kamerze do wizualizacji wyników . Żel - kamera jest w stanie fotografować wyników wyświetlanych na Western blot membranę . Imperium